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CAPÍTULO
FÁRMACOS PARA O CONTROLE DA ACIDEZ GÁSTRICA E PROTETORES DA MUCOSA
Flávia Almeida Santos
Vietla Satyanarayana Rao
23.1 INTRODUÇÃO A secreção ácida gástrica pelas células parietais do estômago é um processo dinâmico regulado por vias neurais, hormonais e parácrinas, a nível central e peri- férico, assim como por estímulos mecânicos e químicos. Os principais estimulantes da produção ácida pelas células parietais são a histamina, a acetilcolina e a gastrina. A secreção ácida estomacal facilita a digestão de proteínas, a absorção de fer- ro, cálcio e vitamina B 12 , e reduz o risco de infecções gastrintestinais ( Helicobacter pylori , Vibrio cholera , Salmonella sp., dentre outros). Uma secreção ácida insu- ficiente pode resultar em má absorção e aumento na susceptibilidade a infecções
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gastrintestinais, enquanto excesso de secreção ácida pode causar desde a doença do refluxo gastroesofágico e úlcera péptica até danos mais severos à mucosa como podem ser vistos na síndrome de Zollinger–Ellison. As principais causas de úlcera péptica são a infecção pelo H. pylori e o uso de anti-inflamatórios não esteroidais (AINEs). O estômago possui sistema de prote- ção de sua mucosa que envolve a secreção de muco e bicarbonato, a hidrofilicidade da mucosa, a rápida renovação celular epitelial, o fluxo sanguíneo e antioxidantes. A perda ou a redução dos mecanismos de proteção da mucosa tornam as células susceptíveis à ação do ácido clorídrico e da pepsina levando a lesões na mucosa gástrica. Fatores relacionados ao estilo de vida como o fumo, o consumo de bebi- das alcoólicas e o estresse também estão associados à formação de úlceras pépticas. O entendimento da regulação da secreção ácida gástrica levou ao desenvol- vimento de terapias supressoras dessa secreção, como os antagonistas dos recep- tores da histamina H2 e os inibidores da bomba de prótons (IBPs) que revolucio- naram o tratamento das desordens associadas ao crescimento da secreção ácida gástrica. 23.2 REGULAÇÃO DA SECREÇÃO ÁCIDA GÁSTRICA O estômago pode ser dividido em áreas topográficas (fundo, corpo e antro) e em áreas funcionais (glândulas parietais ou oxínticas e glândulas pilóricas). A área glandular parietal é composta pelas células parietais e compreende 80% do órgão (fundo e corpo), enquanto a área glandular pilórica é composta pelas célu- las G ou células de gastrina e compreendem 20% do órgão (antro). A região glandular parietal é composta por células mucosas superficiais (pro- dutoras de muco, água e eletrólitos), células mucosas do colo (divisão mitótica), células parietais (produtoras de HCl e de fator intrínseco), células principais (pro- dutoras de pepsinogênio), células enterocromafins (EC) (contêm peptídeo natriuré- trico atrial e adrenomedulina), células semelhantes às enterocromafins (ECL) (con- têm histamina), células Gr (que contêm grelina e obestatina). A região glandular pilórica é composta pelas células mucosas superficiais, células mucosas do colo, células G (secretam gastrina), células D (secretam somatostatina) e células EC. O suco gástrico é composto, principalmente, por ácido clorídrico (HCl), sais, água, pepsina, fator intrínseco, bicarbonato e muco. Os níveis basais de secreção ácida gástrica são de 1-5mEq/h, podendo atingir 6-40mEq/h durante uma estimu- lação máxima. A secreção de ácido clorídrico pelas células parietais ocorre por meio da H+, K+-ATPase (bomba de prótons), presente na membrana apical da célula parietal.
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ser observado quando o pH intragástrico sobe e a acidez luminal diminui. O au- mento da secreção de gastrina e de ácido é observado em um pH intragástrico de 2,5 ou maior, enquanto se observa uma abolição da produção de ácido em um pH de 1. O peptídeo relacionado ao gene da calcitonina (CGRP) liberado pelos neurônios sensoriais aferentes gástricos é um dos responsáveis por esse controle de feedback. O CGRP aumenta a liberação de somatostatina, reduzindo a secre- ção ácida e de gastrina. O mecanismo pelo qual a secreção ácida é aumentada em um pH intragástrico alto ainda não é completamente compreendido. Os principais estimulantes da secreção ácida pelas células parietais são a histamina, a acetilcolina e a gastrina. A histamina eleva as concentrações intra- celulares de AMPc enquanto a acetilcolina e a gastrina elevam as concentrações intracelulares de cálcio, efeitos que acarretam a ativação da bomba de prótons. A histamina, sintetizada e liberada pelas células ECL é o agonista mais po- tente da secreção ácida gástrica. As células ECL produzem histamina por meio da descarboxilaçao da L-histidina pela enzima histidina descarboxilase, sendo a fonte primária de histamina gástrica. A histamina estimula diretamente a célula parietal pela ligação aos receptores H2, acoplados à ativação da adenilil ciclase com produção de AMPc. A histamina também estimula indiretamente a secreção ácida gástrica pela ligação a receptores H3 que inibem a secreção de somatosta- tina. Gastrina, PACAP, VIP (peptídeo intestinal vasoativo) e grelina, estimulam a secreção de histamina, enquanto somatostatina, CGRP, prostaglandinas, peptídeo YY e galanina inibem a secreção de histamina. Os receptores da acetilcolina (ACh), nas células parietais, são do subtipo M3, que são receptores acoplados à proteína G e à ativação da fosfolipase C, com pro- dução de trifosfato de inositol e aumento do cálcio intracelular. A ACh estimula ainda indiretamente as células parietais, via receptores M2 e M4, acoplados a inibição da secreção de somatostatina pelas células D. A gastrina, secretada pelas células G, na mucosa do antrogástrico, em res- posta a estímulos químicos (ex. pH elevado no lúmen gástrico) e mecânicos (ex. distensão gástrica), promove a secreção ácida gástrica primariamente por meio do receptor da colecistocinina 2 (CCK2), estimulando as células ECL a liberarem histamina, que, por sua vez, estimula a secreção ácida. A gastrina e a colecistocinina (CCK) possuem uma sequência idêntica de pep- tídeos na porção carboxi-terminal da molécula (-Gly-Trp-Met-Asp-Phe-NH2). As duas classes de receptores gastrina/CCK são os receptores CCK1 (receptor da colecistocinina 1) e os receptores CCK2. Os receptores CCK1 são específicos para a CCK, enquanto os receptores CCK2 reconhecem a CCK e a gastrina. Os recep- tores CCK2 foram identificados na célula parietal e nas células ECL onde estão acoplados à proteína G, e a ativação da fosfolipase C com aumento do cálcio
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intracelular. A ativação dos receptores CCK2 nas células parietais leva à secreção ácida gástrica, enquanto a ativação desses receptores nas células ECL leva à libe- ração de histamina, sendo o principal mecanismo pelo qual a gastrina estimula a secreção ácida. Acetilcolina, GRP, secretina, agonistas adrenérgicos b2/b3 e cálcio estimulam a secreção de gastrina, enquanto somatostatina, galanina e adenosina inibem a secreção de gastrina. A gastrina age não somente como um segretagogo, mas, na presença de hi- pergastrinemia, também promove a hipertrofia e a hiperplasia das células ECL e das células parietais, diretamente ou indiretamente via fatores de crescimento (como HBEGF e TGF- α ). A ação trófica da gastrina sobre as células ECL é respon- sável pela acidez de rebote observada quando os IBPs são retirados abruptamente. O principal inibidor da secreção ácida gástrica é a somatostatina. A soma- tostatina, das células D nas glândulas parietais e na mucosa da região pilórica, inibe a secreção ácida pelas células parietais, a secreção de histamina pelas células ECL e de gastrina pelas células G. No estômago, as ações da somatostatina são mediadas pelos receptores da somatostatina do tipo 2 (SST2) que estão ligados com a diminuição dos níveis intracelulares de AMPc. Gastrina, GRP, VIP, PACAP, agonistas adrenérgicos b2/b3, secretina, ANP (peptídeo natriurético atrial), ade- nomedulina, amilase, adenosina e CGRP estimulam a secreção de somatostatina, enquanto acetilcolina inibe a secreção de somatostatina. 23.3 FÁRMACOS USADOS PARA O CONTROLE DA ACIDEZ GÁSTRICA
23.3.1 ANTIÁCIDOS
Os antiácidos são sais inorgânicos, relativamente insolúveis, de alumínio, cálcio, magnésio ou sódio ou uma combinação desses, que neutralizam parcialmente o ácido clorídrico gástrico. Geralmente são necessárias altas doses de antiácidos para aumen- tar o pH gástrico de forma significativa. O aumento do pH gástrico inibe a atividade da pepsina e a inibição máxima é atingida em um pH de aproximadamente 4. A potência antiácida é baseada na equivalência molar para neutralizar uma quantidade conhecida de ácido gástrico, sendo o carbonato de cálcio o mais potente, seguido pelo bicarbonato de sódio, sais de magnésio e sais de alumínio. O hidróxido de alumínio e o hidróxido de magnésio/alumínio possuem propriedades citoprotetoras que se de- vem a um aumento na secreção de bicarbonato gástrico, na liberação de prostaglandi- nas e em adição no aumento da secreção de muco e do fluxo sanguíneo microvascular.
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que 5-10% do cloreto de magnésio produzido no trato gastrintestinal pode ser absorvido sistemicamente, pode-se observar hipermagnesemia em pacientes com insuficiência renal. A fim de minimizar os efeitos sobre o trato gastrintestinal, os antiácidos mais utilizados são associações de hidróxido de magnésio e de alumínio. As principais indicações terapêuticas dos antiácidos ocorrem no tratamento da doença ulcerosa péptica, da doença do refluxo gastroesofágico e da dispepsia.
23.3.2 ANTAGONISTAS DOS RECEPTORES H2 DA HISTAMINA
Os bloqueadores dos receptores H 2 da histamina em uso clínico são a cime- tidina, a ranitidina, a famotidina e a nizatidina ( Figura 23.1 ). Figura 23.1 - Estrutura química dos antagonistas dos receptores H Os bloqueadores H2 inibem de forma seletiva e competitiva a ligação da histamina aos receptores H2 gástricos reduzindo a secreção ácida pelas células parietais. A histamina, ao ligar-se ao receptor H2 na célula parietal, eleva a produ-
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ção de AMPc, que, por meio da ativação da proteína cinase A (PKA), fosforila as proteínas envolvidas com o transporte da bomba de prótons do citoplasma para a membrana plasmática da célula parietal. A famotidina é a que possui maior potência relativa para a inibição da se- creção ácida, enquanto a cimetidina é a menos potente. Ranitidina e nizatidina possuem potências iguais. Como resultado da redução da secreção ácida e do aumento do pH gástrico, os bloqueadores H2 tendem a aumentar a concentração sérica da gastrina, além de reduzirem a atividade péptica por uma redução na secreção do pepsinogênio. A absorção de cimetidina, ranitidina e famotidina é rápida. Enquanto cime- tidina, ranitidina e famotidina sofrem extenso metabolismo de primeira passagem com biodisponibilidade entre 43-60% após administração oral, a nizatidina sofre pouco desse metabolismo e apresenta biodisponibilidade de aproximadamente 100%. O pico de concentração plasmática dos bloqueadores H2 ocorre entre 1-3h após administração oral. A ligação às proteínas plasmáticas é de 13-35%. Todos os fármacos são encontrados no líquido cefalorraquidiano, atravessam a barreira placentária e são excretados no leite. Embora existam consideráveis diferenças no clearance e na meia-vida de eli- minação dos bloqueadores H2, a meia-vida no soro varia de 1,5-4h em indiví- duos normais. A eliminação ocorre por uma combinação de metabolismo hepá- tico, filtração glomerular e secreção tubular renal. O clearance renal dos quatro fármacos é de duas a três vezes maior que o clearance da creatinina, refletindo a extensa secreção tubular renal. A distribuição da cimetidina leva à extensa captação pelos rins, pulmões e tecido muscular. O volume de distribuição é da ordem de 1L/Kg. O tempo de meia-vida é de aproximadamente 2h e a ligação às proteínas plasmáticas é de 20%. Sua distribuição no líquido cefalorraquidiano é aumentada na doença he- pática severa, devendo a dose ser reduzida nesses pacientes para evitar a confusão mental, enquanto o volume de distribuição é diminuído em aproximadamente 40% no idoso. Entre 50-80% da dose administrada por via intravenosa são recu- peradas inalteradas da urina. Essa fração é menor após uma administração oral, mas é independente da quantidade da dose. Em pacientes com úlceras gástricas, 40% é recuperado inalterado na urina após administração oral. A excreção biliar da cimetidina ocorre para apenas 2% da dose. Os principais fatores, relacionados ao paciente, que alteram a farmacociné- tica dos bloqueadores H2 são a idade e a função renal. A idade deve ser conside- rada quando esses fármacos são usados em pacientes pediátricos e geriátricos, em que neonatos requerem menores doses devido à redução da secreção renal. Nos idosos observa-se uma redução no clearance por uma redução da função renal. A
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bular renal, o que eleva em 15% os níveis séricos da creatinina, com redução no seu clearance. As principais indicações terapêuticas dos bloqueadores H2 referem-se à doença ulcerosa péptica e à doença do refluxo gastroesofágico e à dispepsia.
23.3.3 INIBIDORES DA BOMBA DE PRÓTONS
Os inibidores da bomba de prótons (IBPs) são os principais fármacos utili- zados no tratamento das doenças relacionadas ao cresciento da secreção ácida gástrica. Desde a introdução do omeprazol, outros IBPs tornaram-se disponíveis, o lansoprazol, o pantoprazol, o rabeprazol, o esomeprazol ( S -enantiômero do omeprazol) e o dexlansoprazol ( R -enantiômetro do lansoprazol) ( Figura 23.2 ). Figura 23.2 - Estrutura química dos inibidores da bomba de prótons. Os IBPs inibem, irreversivelmente, a H+, K+-ATPase (bomba de prótons) gástrica, que realiza a etapa final da secreção ácida. Todos os IBPs inibem a secre-
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ção ácida gástrica basal e estimulada, independentemente da natureza da estimu- lação da célula parietal. A H+, K+-ATPase gástrica é composta de duas subunidades, a subunidade catalítica α que é responsável pelas funções catalíticas e de transporte, e a subu- nidade β que possui as funções estruturais e de ligação à membrana. A bomba de prótons está inativa quando presente no citoplasma como parte da membrana tubular e quando separada dos canalículos, contudo, quando presente na mem- brana dos canalículos, a bomba de prótons secreta ativamente o ácido clorídri- co, promovendo a troca de próton intracelular por potássio extracelular. O ATP catalisa a troca de H+ por K+ na ordem de 2H+/2K+/ATP a pH 6,1 que cai para 1H+/1K+/ATP quando o pH luminal cai abaixo de 3. Os IBPs são benzimidazóis substituídos e como pró-fármacos necessitam de ativação em ambiente ácido. Por serem bases fracas, os IBPs são acumulados nos canalículos secretórios ácidos da célula parietal, onde sofrem ativação por meio de uma protonação, com formação de sulfenamida cíclica, que se liga aos resíduos de cisteína, em especial à cisteína 813, da subunidade α da bomba de prótons, inibindo-a de forma seletiva e irreversível. Apesar de os IBPs possuírem um tempo de meia-vida curto (0,5-2h), a ação antissecretória pode durar até 24-48h, como um resultado da inibição irreversível da bomba de prótons. O potencial inibitório máximo será observado aproxima- damente após três a quatro dias, até que se observe um equilíbrio entre a inibição covalente das bombas de prótons ativas, a subsequente estimulação de bombas inativas e a síntese de novo de novas bombas. O omeprazol é uma mistura racêmica de dois enantiômeros, S -omeprazol (esomeprazol) e R -omeprazol. O lansoprazol é uma mistura racêmica de seus dois enantiômetros, enquanto o dexlanzoprazol é constituído pelo enantiômetro R do lansoprazol ( R -lansoprazol). O dexlansoprazol ao contrário dos demais IPBs é formulado com dois tipos de grânulos de revestimento entérico que são solúveis em diferentes valores de pH, sendo inicialmente liberado no intestino delgado proximal após 1-2h da sua administração, tendo uma segunda liberação do fármaco 4-5h depois na região distal do intestino delgado. A biodisponibilidade dos IBPs varia de 30-85%, enquanto a ligação às pro- teínas plasmáticas está de 95-98%. Omeprazol, esomeprazol, lansoprazol, pantoprazol e dexlansoprazol são metabolizados pelas enzimas do citocromo P450, CYP2C19 e CYP3A4. Ome- prazol é convertido principalmente a metabólitos hidroxi e 5- O -desmetil pelo CYP2C19 e a sulfona pelo CYP3A4. O esomeprazol é predominantemente me- tabolizado pelo CYP3A4 e consequentemente menos dependente do CYP2C19.
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vasculares, outros estudos não mostraram essa correlação, sendo desaconselhado seu uso com omeprazol ou esomeprazol e considerado o uso do pantoprazol que possui comparativamente menor atividade inibitória sobre a CYP2C19. Os efeitos adversos mais comuns dos IBPs são cefaleia, diarreia, rash cutâ- neo, dor abdominal, flatulência, náuseas e constipação. Dentre os efeitos adversos raros, temos hipergastrinemia, síndrome da hipersecreção ácida de rebote, os- teoporose, fraturas de quadril e vértebras, infecções entéricas (p.ex. Clostridium difficile ), pneumonia, hipomagnesemia e hipocalcemia. A terapia com antissecretórios pode levar a hipergastrinemia, hiperplasia da mucosa e aumento da massa de células ECL, que resulta no aumento da capaci- dade de secreção ácida gástrica. A hipersecreção ácida de rebote associada ao uso de IBPs pode ser observada dentro de 14 dias após a descontinuação da terapia, e com sintomas como azia, regurgitação ácida e dispepsia, resultando em reintro- dução da terapia. As principais indicações terapêuticas dos IBPs referem-se ao tratamento da doença ulcerosa péptica, à doença do refluxo gastroesofágico, à dispepsia e à sín- drome de Zollinger–Ellison. 23.4 FÁRMACOS PROTETORES DA MUCOSA A mucosa gástrica é continuamente exposta a substâncias nocivas, como o ácido clorídrico, a pepsina. A manutenção de sua integridade estrutural ocorre por meio de mecanismos de defesa. O epitélio gástrico secreta uma barreira de pro- teção que consiste de água, glicoproteínas ou mucinas, bicarbonato, fosfolipideos, fatores trefoil, prostaglandinas e proteínas do choque térmico. As junções intrace- lulares do epitélio gástrico e a microcirculação da submucosa fornecem oxigênio, bicarbonato e nutrientes enquanto removem toxinas e íons H+. A renovação celu- lar contínua promove uma linha adicional de defesa da mucosa. A defesa da mu- cosa duodenal similarmente consiste em fatores como a secreção de bicarbonato, a prevenção da acidificação intracelular, a ativação neuronal e o fluxo sanguíneo. Além disso, a defesa gastroduodenal envolve a neutralização de espécies reativas de oxigênio, respostas imune inata e adaptativa e inibição da apoptose. A injúria da mucosa pode ocorrer quando os mecanismos de defesa são com- prometidos por agentes nocivos como o ácido gástrico, antiinflamatórios não es- teroidais (AINEs) e Helicobacter pylori. Pode-se chamar atenção para o mecanismo de defesa da mucosa gástrica envolvendo a barreira muco-bicarbonato, uma vez que os fármacos protetores da mucosa disponíveis agem, principalmente, por meio desse mecanismo.
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A mucosa gastroduodenal ajusta seus mecanismos de defesa de acordo com o pH luminal e mantém o balanço ácido-base aumentando a absorção de ácido luminal e a secreção de bicarbonato. As prostaglandinas (PGs), em especial a PGE2, desempenham importan- te papel na modulação da integridade da mucosa e de várias funções do trato gastrintestinal, como a regulação da secreção de bicarbonato gastroduodenal. Os receptores para a PGE2 são receptores acoplados à proteína G, e estão expressos em todo o trato gastrintestinal, incluindo a mucosa gástrica e duodenal. A ati- vação dos receptores EP1 leva ao aumento da secreção de bicarbonato gástrico via sinalização do cálcio intracelular, enquanto, para o aumento da secreção de bicarbonato duodenal, ocorre o aumento intracelular do AMPc e do cálcio via receptores EP3 e EP4. Além das PGs, outros mediadores, como o óxido nítrico (NO), podem mediar aspectos fisiológicos da defesa da mucosa.
23.4.1 SAIS DE BISMUTO
Os sais de bismuto são utilizados com sucesso na gastroenterologia desde o século XIX. Foram inicialmente introduzidos no tratamento da dispepsia e da doença ulcerosa péptica, mas o bismuto também possui uma história de uso como antimicrobiano, especialmente no tratamento da sífilis, assim como no tratamen- to de todos os tipos de diarreia, como na prevenção e tratamento da diarreia do viajante. O conhecimento da ação antimicrobiana do bismuto posteriormente le- vou ao seu uso no tratamento da infecção pelo H. pylori. Adicionalmente, estudos mostram o seu benefício na colite microscópica. Os sais de bismuto são o subsalicilato de bismuto, o subcitrato de bismuto coloidal e o citrato de bismuto. O subsalicilato de bismuto (SSB) é um comple- xo insolúvel de bismuto trivalente e salicilato, que reage com o ácido gástrico formando oxicloreto de bismuto (BiOCl) e ácido salicílico, que é absorvido no estômago e intestino. O SSB não hidrolisado pode reagir com outros ânions como o bicarbonato e o fosfato para formar subcarbonato de bismuto e sais de fosfato de bismuto. O SSB, o BiOCl e os outros sais de bismuto reagem com o sulfeto de hidrogênio no cólon produzindo sulfeto de bismuto, que é o responsável pelo escurecimento das fezes decorrente do uso do subsalicilato de bismuto. O subcitrato de bismuto coloidal (SBC) é um complexo de sal de bismuto do ácido cítrico, que no estômago forma BiOCl e várias estruturas contendo grupos carboxila livres e positivamente carregados. A ação do SBC é similar à do SSB, formando vários complexos de bismuto, assim como sulfeto de bismuto nas fezes. O citrato de bismuto ranitidina é um complexo de ranitina (antagonista H2), bismuto trivalente e citrato, cuja inibição da secreção ácida gástrica ocorre por
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Figura 23.3 - Estrutura química do sucralfato. O sucralfato tem baixa solubilidade em água e, quando dissolvido, em meio ácido ou alcalino, é dissociado em sal de alumínio e sulfato de sacarose, formando uma substância semelhante a um gel de poliânions que se liga com alta afinidade à mucosa normal e lesionada. Na presença de ácido, o composto libera alumínio que adquire carga negativa e se liga eletrostaticamente a grupos químicos carrega- dos positivamente, incluindo proteinas, peptideos, drogas e metais proporcionan- do a formação de um gel que protege a mucosa contra a ação do ácido clorídrico, pepsina e sais biliares. As principais ações do sucralfato que contribuem para a sua eficácia clínica são a inibição da digestão péptica (especialmente pela pepsina A); os vários efei- tos sobre a composição química, estrutura física e resistência à degradação da barreira gel-muco; a estimulação da liberação de prostaglandinas e, consequente- mente, da secreção de bicarbonato, produção de muco, fluxo sanguíneo e divisão celular; a estimulação da produção de muco e bicarbonato independentemente de prostaglandinas e os efeitos sobre o crescimento celular, regeneração e reparo da mucosa (se liga a fatores de crescimento, como FCFb e PDGF, estimulando a angiogênese, a produção de tecido de granulação, levando à reepitelização e ao reestabelecimento da integridade da mucosa gastroduodenal).
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O sucralfato é uma droga segura e bem tolerada, e seu principal efeito adver- so é a constipação. Outros efeitos adversos incluem boca seca, náuseas, vômitos, cefaléia, urticária e rash cutâneo. A absorção e a biodisponibilidade de alguns fármacos podem ser reduzi- das quando administrados em combinação com fluoroquinolonas, aminofilina, teofilina, tetraciclinas, cetoconazol, fenitoína, digoxina, levotiroxina, cimetidina, ranitidina e amitriptilina. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS AKIBA, Y.; KAUNITZ, J. D. Luminal chemosensing and upper gastrointestinal mucosal defenses. The American Journal of Clinical Nutrition. 90(3): 826S-831S, 2009. ANDERSSON, T. Pharmacokinetics, metabolism and interactions of acid pump inhibitors. Focus on omeprazole, lansoprazole and pantoprazole. Clinical Pharmacokinetics. 31(1): 9-28, 1996. ARMSTRONG, J. A.; WEE, S. H.; GOODWIN, C. S.; WILSON, D. H. Response of Campylobacter pyloridis to antibiotics, bismuth and an acid-reducing agent in vitro-an ultrastructural study. Journal of Medical Microbiology. 24(4): 343-350, 1987. ATKINSON, N. S.; REYNOLDS, D. J.; TRAVIS, S. P. Lemonade Legs: Why do Some Patients Get Profound Hypomagnesaemia on Proton-Pump Inhibitors?. Intestinal Research. 13(3): 227-232, 2015. BARRETT, T. D.; LAGAUD, G.; WAGAMAN, P.; FREEDMAN, J. M.; YAN, W.; ANDRIES, L.; RIZZOLIO, M. C.; MORTON, M. F.; SHANKLEY, N. P. The cholecystokinin CCK2 receptor antagonist, JNJ-26070109, inhibits gastric acid secretion and prevents omeprazole-induced acid rebound in the rat. British Journal of Pharmacology. 166(5): 1684-1693, 2012. CABOCLO, J. L.; CURY, FDE. A.; BORIN, A. A.; CABOCLO, L. O.; RIBEIRO, M. F.; DE FREITAS, P. J.; ANDERSSON, S. Gastric secretion elicited by conditioning in rats. Scandinavian Journal of Gastroenterology. 44(6): 672- 679, 2009.
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